Laporan Mikrobiologi Most Probable Number

Laporan Mikrobiologi Most Probable Number

BAB I

PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Kuantitasi mikroba menunjukan jumlah koloni yang mampu di bentuk oleh mikroba

tertentu. Beberapa koloni bakteri ini, bagi tubuh manusia akan menyebabkan penyakit. Seteril

dari bakteri untuk maknan terutama minuman, sangat perlu di ketahui demi menjaga kesehatan.

Air minum dari berbagai tempat memepunyai jenis-jenis bakteri yang tidak sama untuk air

minum hasil penyulingan diharapkan sudah terbebas dari bakteri (Dwidjoseputro, 1994).

Pertumbuhan sering kali dinyatakan secara singkat sebagai kemampuan untuk

menghasilkan 2 sel baru dan hidup. Sel dikatakan hidup bila dapat menghasilkan sel baru. Bila

tidak mempunyai kemampuan ini lagi, Maka sel dinyatakan tidak hidup lagi atau mati. Analisis

pertumbuhan bakteri dapat dilakukan dengan beberapa cara yaitu, membandingkan jumlah sel,

berat kering, konsentrasi protein atau nitrogen dan kekeruhan (Dwidjoseputro, 1994).

Perhitungan jumlah mikroba dapat dilakukan dengan perhitungan langsung maupun

tidak langsung. Perhitungan secara langsung dapat mengetahui beberapa jumlah mikroorganisme

pada suatu bahan, pada suatu saat tertentu tanpa memberikan perlakuann terlebih dahulu,

sedangkan jumlah mikroorganisme yang diketahui dari cara tidak langsung terlebih dahulu harus

memeberikan perlakuan tertentu sebelum dilakukan perhitungan. Perhitungan secara langsung

dapat dilakukan dengan beberapa cara antara lain adalah memebuat preparat dari suatu bahan

(preparat sederhana di warnai atau tidak di warnai) dan penggunaan ruang hitung (counting

chamber), sedangkan perhitungan cara tidak langsung hanya untuk mengetahui jumlah

mikroorganisme dalam suatu bahan yang masih hidup saja. (Dwidjoseputro, 1994).

Oleh karena itu yang melatar belakangi percobaan ini ialah agar pratikan dapat

mengetahui tentang teknik-teknik perhitungan mikroba dan salah satunya yaitu metode MPN

dan mengerti tentang perhitungan mikroba pad prinsip percobaan metode MPN serta hal yang

berkaitan dengan bakteri koliform pada percobaan yang dilakukan.

1.2 Tujuan

Untuk mengetahui prinsip metode MPN

Untuk mengetahui fungsi dari media EMBA, BGLBB, LB

Untuk mengetahui proses terjadinya gelembung pada tabung durham di setiap uji percoban MPN

BAB IITINJAUAN PUSTAKA

Perhitungan secara tidak langsung ada beberapa cara yaitu : perhitungan pada cawan

petri (total plate count) TPC, perhitungan melalui pengenceran, perhitungan jumlah terkecil atau

terdekat (MPN metode), dan kalorimeter (cara kekeruhan atau turbidimetri). Metode MPN terdiri

dari tiga tahap, yaitu uji pendugaan (presumtive test), uji konfirmasi (confirmed test), dan uji

kelengkapan (completed test). Dalam uji tahap pertama, keberadaan coliform masih dalam

tingkat probabilitas rendah; masih dalam dugaan. Uji ini mendeteksi sifat fermentatif coliform

dalam sampel. Metode perhitungan MPN sering digunakan dalam pengamatan untuk menghitung

jumlah bakteri yang terdapat di dalam tanah seperti Nitrosomonas dan Nitrobacter. Kedua jenis

bakteri ini memegang peranan penting dalam meningkatkan pertumbuhan dan produksi tanaman,

sehubungan dengan kemampuannya dalam mengikat N2 dari udara dan mengubah amonium

menjadi nitrat (Dwidjoseputro, 1994).

Output metode MPN adalah nilai MPN. Nilai MPN adalah perkiraan jumlah unit tumbuh

(growth unit) atau unit pembentuk koloni (colony forming unit) dalam sampel. Namun pada

umumnya, nilai MPN juga diartikan sebagai perkiraan jumlah individu bakteri. Satuan yang

digunakan, umumnya per 100 mL atau per gram. Metode MPN memiliki limit kepercayaan 95

persen sehingga pada setiap nilai MPN, terdapat jangkauan nilai MPN terendah dan nilai MPN

tertinggi (Dwidjoseputro, 1994).

Bakteri coliform adalah golongan bakteri intestinal, yaitu hidup dalam saluran

pencernaan manusia. Bakteri coliform adalah bakteri indikator keberadaan bakteri patogenik

lain. Lebih tepatnya, sebenarnya, bakteri coliform fecal adalah bakteri indikator adanya

pencemaran bakteri patogen. Penentuan coliform fecal menjadi indikator pencemaran

dikarenakan jumlah koloninya pasti berkorelasi positif dengan keberadaan bakteri patogen.

Selain itu, mendeteksi coliform jauh lebih murah, cepat, dan sederhana daripada mendeteksi

bakteri patogenik lain (Dwidjoseputro, 1994).

Salah satu anggota kelompok coliform adalah E.coli. Karena E.coli adalah bakteri

coliform yang ada pada kotoran manusia, maka E.coli sering disebut sebagai coliform fekal.

Pengujian coliform jauh lebih cepat jika dibandingkan dengan uji E.coli karena hanya

memerlukan uji penduga yang merupakan tahap pertama uji E.coli (Dwidjoseputro, 1994).

Istilah bakteri indikator sanitasi dikenal dalam bidang mikrobiologi pangan. Bakteri

indikator sanitasi adalah bakteri yang keberadannya dalam pangan menunjukkan bahwa air atau

makanan tersebut pernah tercemar oleh kotoran manusia yang mengingat banyaknya jumlah

mikroorganisme ini, maka perlu dilakukan suatu uji pemeriksaan terhadap bahan pangan tersebut

agar aman dikonsumsi. Bakteri-bakteri indikator sanitasi umumnya adalah bakteri yang lazim

terdapat dan hidup pada usus manusia sehingga dengan adanya bakteri tersebut pada air atau

makanan dapat menunjukkan bahwa dalam satu atau lebih tahap pengolahan air atau makanan

pernah mengalami kontak dengan kotoran yang berasal dari usus manusia dan oleh sebab itu

kemungkinan terdapat bakteri patogen lain yang berbahaya. Ada tiga jenis bakteri yang dapat

digunakan untuk menunjukkan adanya masalah sanitasi, yaitu Escherichia coli, kelompok

Streptococcus (Enterococcus) fecal, dan Clostridium perfringens (Hastowo, 1992).

Pengukuran kuantitatif populasi mikroorganisme sangat diperlukan untuk berbagai

macam penelaahan mikrobiologis. Terdapat berbagai macam cara untuk menghitung jumlah

mikroorganisme, akan tetapi secara mendasar, ada dua cara yaitu secara langsung dan secara

tidak langsung. Ada beberapa cara perhitungan secara langsung, antara lain adalah dengan

membuat preparat dari suatu bahan (preparat sederhana diwarnai atau tidak diwarnai) dan

penggunaan ruang hitung (counting chamber). Sedangkan perhitungan cara tidak langsung hanya

untuk mengetahui jumlah mikroorganisme pada suatu bahan yang masih hidup saja (viabel

count). Dalam pelaksanaannya, ada beberapa cara yaitu : perhitungan pada cawan petri (total

plate count/TPC), perhitungan melalui pengenceran, perhitungan jumlah terkecil atau terdekat

(MPN methode), dan kalorimeter (cara kekeruhan atau turbidimetri) (Hastowo, 1992).

Berbagai macam uji mokrobiologis dapat dilakukan terhadap bahan pangan, meliputi uji

kuantitatif mikroba untuk menentukan daya tahan suatu makanan, uji kualitatif bakteri patogen

untuk menenetukan tingkat keamanan dan uji indikator untuk menentukan tingkat sanitasi

makanan tersebut. Pengujian yang dilakukan terhadap tiap bahan pangan tidak sama tergantung

berbagai faktor, seperti jenis dan komposisi bahan pangan (Hastowo, 1992).

Metode MPN (Most Probable Number) untuk uji kualitas mikrobiologi air dalam

praktikum digunakan kelompok Coliform sebagai indikator. Kelompok Coliform mencakup

bakteri yang bersifat aerobik dan anaeorobik fakultatif, batang gram negatif dan tidak

membentuk spora. Coliform memfermentasikan laktosa dengan pembentukkan asam dan gas

dalam waktu 48 jam pada suhu 35°C (Hastowo, 1992).

Dalam metode MPN digunakan medium cair, berbeda dengan metode cawan yang

menggunakan medium padat (Agar). Perhitungan dilakukan berdasarkan jumlah tabung yang

positif, yaitu yang ditumbuhi oleh mikroba setelah inkubasi pada suhu dan waktu tertentu.

Pengamatan tabung positif dapat dilihat dengan timbulnya kekeruhan atau terbentuk gas dalam

tabung durham (Lay, 1992).

Pendekatan lain untuk enumerasi bakteri hidup adalah dengan metode MPN. Metode

MPN didasarkan pada metode statistik (teori kemungkinan). Metode MPN ini umumnya

digunakan untuk menghitung jumlah bakteri pada air khususnya untuk mendeteksi adanya

bakteri koliform yang merupakan kontaminan utama sumber air minum. Ciri-ciri utamanya yaitu

bakteri gram negatif, batang pendek, tidak membentuk spora, memfermentasi laktosa menjadi

asam dan gas yang dideteksi dalam waktu 24 jam inkubasi pada 37º C. Sampel ditumbuhkan

pada seri tabung sebanyak 3 atau 5 buah tabung reaksi untuk setiap kelompok. Apabila dipakai 3

tabung maka disebut seri 3, dan jika dipakai 5 tabung maka disebut 5 seri. Media pada tabung

adalah Lactose Broth yang diberi indikator perubahan pH dan ditambah tabung durham.

Pemberian sampel pada tiap seri tabung berbeda-beda. Untuk sampel sebanyak 10 ml

ditumbuhkan pada media LBDS (Lactose Broth Double Stegth) yang memiliki komposisi Beef

extract (3 gr), peptone (5 gr), lactose (10 gr) dan Bromthymol Blue (0,2 %) per liternya.

Untuk sampel 1 ml dan 0,1 ml dimasukkan pada media LBSS (Lactose Broth Single Stegth)

yang berkomposisi sama tapi hanya kadar laktosa setengah dari LBDS yaitu 5 gr (Lay, 1992).

MPN (most Probable Number). Metode hitungan cawan dengan menggunakan medium

padat, tetapi pada metode MPN dengan menggunakan medium cair di dalam tabung reaksi.

Perhitungan MPN berdasarkan pada jumlah tabung reaksi yang positif, yakni yang ditumbuhi

oleh mikroba setelah inkubasi pada suhu dan waktu tertentu. Pengamatan tabung yang positif

dapat dilihat dengan mengamati timbulnya kekeruhan atau terbentuknya gas di dalam tabung

kecil (tabung durham) yang diletakkan pada posisi terbalik, yaitu untuk jasad renik yang

membentuk gas. Untuk setiap pengenceran pada umumnya dengan menggunakan 3 atau 5 seri

tabung. Lebih banyak tabung yang digunakan menunjukkan ketelitian yang lebih tinggi, tetapi

alat gelas (tabung reaksi) yang digunakan juga lebih banyak (Dwidjosepuutro, 2005).

Perhitungan bakteri hidup dilakukan dengan cara seri pengenceran. Cara ini secara luas

digunakan untuk menghitung bakteri hidup dalam berbagai cairan seperti air, susu, biakan cair

dan sebagainya. Serentetan pengenceran dibuat untuk kemudian ditanam dalam medium

pembiakan bulyon agar dan setelah inkubasi jumlah koloni dihitung. Setelah dikonversi sesuai

dengan pengencerannya, akan diketahui jumlah bakteri per milliliter. Karena pengenceran

dikerjakan secara lipat ganda atau secara desimal, maka angka yang diperoleh hanya angka

perkiraan, yang biasa disebut Most Probable Number (MPN) (Irianto, 2006).

Prinsip untama dari metode MPN ini adalah mengencerkan sampel sampai tingkat

tertentu sehingga didapatkan konsentrasi mikroorganisme yang pas/sesuai dan jika ditanam

dalam tabung menghasilkan frekuensi pertumbuhan tabung positif “kadang-kadang tetapi tidak

selalu”. Semakin besar jumlah sampel yang dimasukkan (semakin rendah pengenceran yang

dilakukan) maka semakin sering tabung positif yang muncul. Semakin kecil jumlah sampel yang

dimasukkan (semakin tinggi pengenceran yang dilakukan) maka semakin jarang tabung reaksi

positif yang muncul. Jumlah sampel/pengenceran yang baik adalah yang menghasilkan tabung

positif “kadang-kadang tetapi tidak selalu”. Semua tabung positif yang dihasilkan sangat

tergantung dari probabilitas sel yang terambil oleh pipet saat memasukkannya kedalam media.

Oleh karena itu homogenisasi sangat mempengaruhi metode ini. Frekuensi positif (ya) atau

negative (tidak) ini menggambarkan konsentrasi mikroorganisme pada sampel sebelum

diencerkan (Dwidjoseputro, 2005).

Dalam metode MPN pengenceran sampel harus lebih tinggi daripada pengenceran pada

hitungan cawan, sehingga beberapa tabung yang berisi medium cair yang diinokulasikan dengan

larutan hasil pengenceran tersebut mengandung 1 jasad renik, beberapa tabung mungkin

mengandung lebih dari 1 sel, sedangkan tabung yang lain mengandung sel sama sekali. Dengan

demikian setelah inkubasi diharapkan terjadi pertumbuhan pada beberapa tabung, yang

dinyatakan sebagai tabung positifm sedangkan tabung lainnya negatif (Waluyo, 2004).

Metode MPN biasanya digunakan untuk menghitung jumlah mikroba di dalam sampel

yang berbentuk cair, meskipun dapat juga digunakan untuk sampel yang berbentuk padat dengan

terlebih dahulu membuat suspense 1:10 dari sampel tersebut. Kelompok jasad renik yang dapat

dihitung dengan metode MPN juga bervariasi tergantung dari medium yang digunakan untuk

pertumbuhan (Dwidjoseputro, 2005).

Lebih lanjut mengenai metode MPN, dari setiap pengenceran masing-masing

dimasukkan 1 ml masing-masing ke dalam tabung yang berisi medium, dimana untuk setiap

pengenceran digunakan 3 atau 5 seri tabung. Setelah inkubasi pada suhu dan waktu tertentu,

dihitung jumlah tabung yang positif. Kriteria tabung positif atau tidak ditandai dengan timbulnya

kekeruhan atau gas pada tabung durham. Misalnya pada pengnceran pertama, 3 tabung

menghasilkan pertumbuhan positif, pada pengenceran ke 2 tabung positif, pada pengenceran ke 3

satu tabung positif, dan pada pengenceran teakhir tidak ada tabung yang positif. Kombinasinya

menjadi 3,2,1,0 dan jika diambil 3 pengenceran pertama kombinasinya menjadi 3,2,1. Angka

kombinasi ini kemudian dicocokkan dengan table MPN, kemudian nilai MPN sampel dapat

dihitung sebagai berikut :

MPN sampel = Nilai MPN dari table x 1

Pengenceran tabung tengah

BAB IIIMETODOLOGI PERCOBAAN

3.1 Waktu dan Tempat

Pada pratikum mikrobilogi ini berjudul tentang perhitungan jumlah mikroba dengan

menggunakan metode MPN yang dilaksanakan pada hari rabu, pada tanggal 20 April 2011 pada

pukul 10.00-12.00 WITA dan dilanjutkan pengamatan pada pada hari kamis, pada tanggal 21

April 2011 pada pukul 05.00-06.00 WITA. dan dilanjutkan pengamatan ke dua pada pada hari

sabtu, pada tanggal 23 April 2011 pada pukul 08.00-10.00 WITA. Dan di lanjutkan pengamatan

ke tiga pada pada hari senin, pada tanggal 25 April 2011 pada pukul 12.00-12.30 WITA.

Bertempat di Laboratorium Mikrobiologi dan Bioteknologi Fakultas Matematika dan Ilmu

Pengetahuan Alam Universitas Mulawarman Samarinda.

3.2 Alat dan Bahan

3.2.1 Alat

Botol sampel

Rak tabung reaksi

Tabung reaksi

Tabung durham

Blue tip

Mikropipet

Bunsen

Korek

Cawan petri

Jarum inokulasi/ose

Vortex

Pipet volume

Inkubator

Laminar air flow

Autoclave

Pensil

Almunium foil

Penyemprot alkohol

3.2.2 Bahan

Lactose Borth (LB)

Brilliant Green lactose Bile Broth (BGLBB)

Eosin Methylene Blue Agar (EMBA)

Alkohol 70%

Garm fisiologi

Kertas label

Tisu

Air galon (minum)

Air sungai

Air sumur

Air PDAM

NaCl 45 ml

3.3 Cara kerja

3.3.1 Uji penduga

1. Disiapkan Alat dan Bahan.

2. Disiapkan 5 tabung reaksi setiap seri pengenceran yang di pilih.

3. Dimasukan 5 ml sampel air minum pada setiap tabung reaksi seri pengenceran 10.

4. Dimasukan 0,5 ml sampel pada seri pengenceran 1 .

5. Dimasukan 0,5 ml sampel pada larutan NaCl 4,5 ml .

6. Dimasukan 0,5 ml campuran NaCl tadi pada setiap tabung reaksi seri pengenceran 10-1.

7. Dimasukan 0,5 ml larutan NaCl 4,5 ml yang telah dilarutkan sampel pada larutan NaCl 4,5 ml

untuk pengenceran 10-2.

8. Dimasukan campuran NaCl 4,5 ml tadi pada setiap seri tabung reaksi pengenceran 10-2.

9. Diinkubasi dalam suhu 350C selama 24 jam dan sebelumnya diberi label pada setiap

pengenceran yang dilakukan.

10. Diamati perubahan pada tabung reaksi.

11. Dihitung jumlah bakteri yang terdapat pada sampel.

3.3.2 Uji penegas

1. Disiapkan alat dan bahan.

2. Dipijarkan jarum ose dan dimasukan ke dalam tabung reaksi pada uji penduga pada pengenceran

10.

3. Dimasukan jarum ose pada yang elah dimasukan ke dalam pengenceran 10 ke dalam media

BGLBB.

4. Dipijarkan lagi jarum ose dan di ulangi perlakuan yang sama hingga ke lima tabung reaksi setiap

seri pengenceran yang di lakukan.

5. Diberi label pada setiap seri tabung reaksi pengenceran yang dilakukan.

6. Diinkubasi pada suhu 350C selama 24 jam.

7. Diamati gas yang terbentuk pada tabung durham.


3.3.3 Uji pelengkap

1. Disiapkan alat dan bahan.

2. Dipijarkan jarum ose pada lampu bunsen.

3. Dimasukan jarum ose pada tabung reaksi pengenceran ke 10.

4. Digoresakan jarum ose yang telah di masukan padapengenceran 1o pada media EMBA yang

terdapat pada cawan petri dan di gunakan pada kolom yang tersedia hingga ke lima seri tabung

pengnceran 10.

5. Dipijarkan lagi jarum osedan di lakukanperlakuan yang sama hingga ke lima tabung reaksi

setiap seri pengenceran yang di lakukan.

6. Diberi label.

7. Diinkubasi pada suhu 350C selama 24 jam.

8. Diamati setiap cawan petri yang terdapat bakteri E.coli.


BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil Pengamatan

4.1.1 Tabel Hasil Pengamatan Metode MPN

Media Seri Pengamata

n

Nilai

MPN

MPN

10 1 10-1 10-2 Tabel

LB 4 4 3 1 33 3300

GLBB 3 4 1 2 26 2600

EMBA 0 0 0 0 - -

4.2 Perhitungan

4.2.1 Perhitungan Media LB (lactose Borth)

MPN Count : Nilai MPN Tabel x 10

(pengenceran tabung tengah)

: 33 x 10

10-1

: 3300 Cfu/100 ml

4.2.2 Perhitungan Media GLBB (green lactose bile borth)



: 26 x 10

10-1

: 2600 Cfu/100 ml

4.2.3 Perhitungan Media EMBA (eosin methylene blue agar)



: 0 x Cfu

100 ml

: 0 Cfu/100 ml

4.3 Pembahasan

Metode MPN (Most Probable Number) adalah metode yang digunakan untuk

menghitung koliform di dalam air dengan menggunakan pengujian fermentasi dalam tabung.

Tiga pengujian itu diantaranya adalah uji penduga (Presumtive Test), uji penegas (Confirmed

Test), dan uji pelengkap (Completed Test) Output metode MPN adalah nilai MPN. Nilai MPN

adalah perkiraan jumlah unit tumbuh (growth unit) atau unit pembentuk koloni dalam sampel

(Dwidjoseputro, 1994).

Metode MPN ini umumnya digunakan untuk menghitung jumlah bakteri pada air

khususnya untuk mendeteksi adanya bakteri koliform yang merupakan kontaminan utama

sumber air minum. Ciri-ciri utamanya yaitu bakteri gram negatif, batang pendek, tidak

membentuk spora, memfermentasi laktosa menjadi asam dan gas yang dideteksi dalam waktu 24

jam inkubasi pada 37º C (Dwidjoseputro, 1994).

E.coli adalah bakteri koliform yang ada pada kotoran manusia, maka E.coli sering

disebut sebagai coliform fekal. Bakteri coliform adalah golongan bakteri intestinal, yaitu hidup

dalam saluran pencernaan manusia dan merupakan bakteri indikator keberadaan bakteri

patogenik lain. Lebih tepatnya, sebenarnya bakteri coliform fecal adalah bakteri indikator adanya

pencemaran bakteri patogen. Penentuan coliform fecal menjadi indikator pencemaran

dikarenakan jumlah koloninya pasti berkorelasi positif dengan keberadaan bakteri patogen.

Selain itu, mendeteksi coliform jauh lebih murah, cepat, dan sederhana daripada mendeteksi

bakteri patogenik lain (Dwidjoseputro, 1994).

Media Lactose broth (LB) digunakan sebagai media untuk mendeteksi kehadiran

coliform dalam air, makanan, dan produk susu, sebagai kaldu pemerkaya (pre-enrichment broth)

untuk Salmonella dan dalam mempelajari fermentasi laktosa oleh bakteri pada umumnya. Pepton

dan ekstrak beef menyediakan nutrien esensial untuk memetabolisme bakteri. Laktosa

menyediakan sumber karbohidrat yang dapat difermentasi untuk organisme koliform.

Pertumbuhan dengan pembentukan gas adalah presumptive test untuk coliform. Lactose broth

dibuat dengan komposisi 0,3% ekstrak beef; 0,5% pepton; dan 0,5% laktosa (lay, 1992)

Media EMBA (Eosin Methylene Blue Agar) mempunyai keistimewaan mengandung

laktosa dan berfungsi untuk memilah mikroba yang memfermentasikan laktosa

seperti Staphylcoccus. aureus, P. aerugenosa, dan Salmonella. Mikroba yang memfermentasikan

laktosa menghasilkan koloni dengan inti berwarna gelap dengan kilap logam. Sedangkan

mikroba lain yang dapat tumbuh koloninya tidak berwarna. Adanya eosin dan methylene blue

membantu mempertajam perbedaan tersebut. Namun demikian, jika media ini digunakan pada

tahap awal karena kuman lain juga tumbuh terutama P. Aerugenosa dan Salmonella sp. dan dapat

menimbulkan keraguan. Bagaiamanapun media ini sangat baik untuk mengkonfirmasi bahwa

kontaminan tersebut adalah E.coli. Agar EMB (levine) merupakan media padat yang dapat

digunakan untuk menentukan jenis bakteri E.coli dengan memberikan hasil positif dalam tabung.

EMB yang menggunakan eosin dan methylene blue sebagai indikator memberikan perbedaan

yang nyata antara koloni yang meragikan laktosa dan yang tidak. Medium tersebut mengandung

sukrosa karena kemempuan bakteri E.coli yang lebih cepat meragikan sukrosa daripada laktosa

(Hastowo, 1992).

Media BGBB (Brilliant Green Bile Broth) digunakan untuk mengkonfirmasi hasil tes

positif dugaan. Brilliant Green Bile Broth (BGBB) juga disebut sebagai Brilliant Green Lactose

Bile Broth (BGLBB). Enzimatik Intisari dari Gelatin adalah sumber karbon dan nitrogen

digunakan untuk kebutuhan pertumbuhan umum di Brilliant Green lactose Bile Broth. Oxbile

dan Brilliant Green menghambat bakteri Gram positif dan bakteri Gram negatif banyak, selain

E.coli. Laktosa merupakan sumber karbohidrat. Bakteri yang fermentasi laktosa dan

menghasilkan gas yang terdeteksi Penggunaan utama dari media ini adalah untuk

mengidentifikasi keberadaan E.coli pada makanan. Selama inkubasi 24 jam pada suhu 37 °C

E.coli akan memfermentasi laktosa dalam kaldu dengan produksi gas dan Gas ini akan terkumpul

dalam sebuah tabung durham terbalik (Hastowo, 1992).

Uji Penduga (Presumptive Test) : satu seri yang berisi 9 atau 12 tabung yang berisi

Lactose Broth dan tabung durham diinokulasikan dengan sampel air untuk menguji apakah air

tersebut mengandung bakteri yang bisa memfermentasikan laktosa yang memproduksi gas. Jika

setelah inkubasi gas timbul pada Lactose Broth, diduga ada bakteri coliform di sampel air

tersebut. Uji penduga merupakan tes pendahuluan tentang ada tidaknya kehadiran bakteri

coliform berdasarkan terbentuknya asam dan gas yang disebabkan karena fermentasi laktosa oleh

bakteri golongan E.coli. Terbentuknya asam dilihat dari kekeruhan pada media laktosa, dan gas

yang dihasilkan dapat dilihat dalam tabung durham yang berupa gelembung udara. Banyaknya

kandungan bakteri Escherichia coli dapat dilihat dengan menghitung tabung yang menunjukkan

reaksi positif terbentuknya asam dan gas dan dibandingkan dengan tabel MPN. dan jika tidak

terbentuk gas dalam tabung durham, dihitung sebagai hasil negatif. Jumlah tabung yang positif

dihitung pada masing-masing seri, MPN penduga dapat dihitung dengan melihat tabel MPN

(Lay, 1992).

Uji penguat atau pelengkap. Merupakan uji dari tabung yang positif terbentuk asam dan

gas terutama pada masa inkubasi 1 x 24 jam, suspensi diinokulasikan pada media Eosin

Methylen Blue Agar (EMBA) secara aseptik dengan menggunakan jarum inokulasi. Koloni

bakteri Escherichia coli tumbuh berwarna merah kehijauan dengan kilap metalik (Lay, 1992).

Uji penegas untuk menentukan bakteri Escherichia coli. Dari koloni yang berwarna

pada uji penguat atau pelengkap. Uji penegas merupakan suatu uji sebelum dilakukanya uji

pelengkap dimana digunakn media (BGLBB) Brilliant Green Lactose Bile Broth. Dimana pada

media ini di lihat fermentasi laktosapada bakteri E.coli dengan terbentuknya asam dan

gelembung. Pada uji penegas banyaknya kandungan bakteri E.coli dilihat dengan menghitung

tabung yang terdapat gelembung di dalam tabung durham dan dihitung MON count dengan

melihat hasil dari MPN tabel dikali sepuluh per pengenceran tengah dan dari hasil uji penegas

akan disimpulkan dengan uji penguat atau pelengkap (Dwidjoseputro, 1994).

Hasil pengamatan pada perhitungan jumlah bakteri dengan menggunakan metode MPN

diketahui, pada uji penduga digunkannya media lactose borth dengan sampel air minum yang

digunakan diketahui seri pengamatan 10 terdapat empat gelembung, pengenceran 1 terdapat

empat gelembung, pengenceran 10-1 terdapat tiga gelembung, dan pengenceran 10-2 terdapat satu

gelembung. Pada MPN tabel diketahui 33 nilai MPN tabelnya dan dari perhitungan MPN count

didapatkan hasi 3300 Cfu /100 ml.

Pada uji penegas dengan menggunakan media Brilliant Green Lactose Bile Broth dapat

diketahui seri pengamtannya pada pengenceran 10 terdapat lima gelembunng, pada pengencera 1

terdapat empat gelembung, dan pada pengenceran 10-1 terdapat satu gelembung sedangkan pada

pengenceran 10-2 terdapat dua gelembung. Dari hasil pengenceran didapatkan hasl nilai

MPNtabelnya 26, dengan perhitungan mencari Mpn count hasil yang didapat dari MPN-nya

adalah 2600 Cfu/100 ml.

Pada uji penguat atau pelengkap dari setiap seri pengenceran tidak didapatkan hasil

adanya bakteri E.coli yang tumbuh pada sempel air minum. Jadi, hasil yang didapat adalah nihil

atu tidak ada bakteri E.coli yang tumbuh.

Faktor kesalahan pada percobaan perhitungan jumlah mikroba pada metode MPN.

Trejadi pada cara penggoresan pada media EMBA yang tidak sesuai dengan alur dan melewati

dari garis pembatas kolom, serta kurang hati-hati dalam melakukan percobaan sehingga terdapat

tabung reaksi yang pecah akibat kecerobohan.

BAB VPENUTUP

5.1 Kesimpulan

Dari hasil pratikum mengenai “perhitungan jumlah mikroba dengan metode MPN” dapat

disimpulka bahwa :

Prinsip dari metode MPN adalah suatu metode perhitungan jumlah mikroba yang menggunakn

tiga tahap uji yaitu uji penduga , uji penegas/konfirmasi dan uji pelengkap yang didasarkan untuk

mengetahui jumlah dari mikroba coliform.

Fungsi dari media Eosin Methylene blue agar (EMBA) iaalh sebagi indikator untuk memberikan

perbedaan yang nyata antara koloni yang memefermentasikan laktosa dan yang tidak.

Sedangkan fungsi dari media brilliant green laktose bile borth (BGLBB) ialah sebagai

pengkonfirmasi hasil tes positif uji penduga. Dan media lactose borth (LB) berfungsi sebagai

media untuk mendeteksi keberadaan bakteri coliform dalam air.

Proses terjadinya gelembung pada tabung durham terjadi karena adanya fermentasi laktosa yang

di lakukan oleh bakteri golongan E.coli sehingga terbentuk asam pada media yang tedapat

laktosa, yang dapat di lihat dengan kekeruhan sehingga menghsilkan gas atau gelembung dara

pada tabung durham

5.2 Saran

Di harpkan prtikan harus melepas peralatan acsesoris seperti gelang dan cincin, agar tidak

mengganggu saat dalm melakukan percobaan perhitungan jumlah mikroba dengan menggunakan

metode MPN.

Laporan Mikrobiologi Most Probable Number

Documents

Transcript of Laporan Mikrobiologi Most Probable Number