PEMERIKSAAN BERAT JENIS URIN

TUJUAN : MENGETAHUI KEPEKATAN URINALAT : URINOMETER, GELAS UKUR 50 mL, TINGGI 15 cm

TERMOMETER 0o – 50o C (Skala ½o C)

CARA PEMERIKSAANBACA & CATAT SUHU TERA URINOMETER & SUHU KAMAR/SUHU URIN.TUANG 50 mL URIN KE DALAM GELAS UKURMASUKKAN URINOMETER KE GELAS UKUR. PUTAR URINOMETER, JAGA AGAR TIDAK MENEMPEL DI DINDING GELAS

UKURBACA MENISCUS BAWAH ( 3 angka di belakang koma)

PERHITUNGAN :UNTUK TIAP PERBEDAAN SUHU TERA-SUHU KAMAR 3oC DI ATAS SUHU

TERA, NILAI BJ + 1 DAN BILA SEBALIKNYA NILAI BJ – 1.CONTOH : URINOMETER MENUNJUKKAN BJ : 1.010 , SUHU TERA URINOMETER

20oC, SUHU KAMAR 29oC (PERBEDAAN 9oC) 9/3 =3BJ URIN : 1.010 + 0.003 = 1.013

PEMERIKSAAN URIN SECARA SEMIKUANTITATIF DENGAN ASAM ASETAT 6% DAN ASAM SULFOSALISILAT 20%

PEMERIKSAAN PROTEIN URIN :PEMERIKSAAN PENYARING KELAINAN GINJAL & SALURAN KEMIH

PROTEIN URIN (+) TANDA DINI KELAINAN GINJAL ?

(GLOMERULONEFRITIS/KERUSAKAN TUBULUS GINJAL)BUKAN KELAINAN GINJAL :

PASCA KERJA BERAT, DEHIDRASI, DEMAM, STROKE, KEJANG-KEJANG, HIPERTIROIDI, dsbPERLU KONFIRMASI DGN PEMERIKSAAN PROTEIN URIN ULANGAN

(METODA BERBEDA, SAMPEL URIN BERBEDA)PEMERIKSAAN URIN LANJUTAN misal : PEMERIKSAAN URIN KUANTITATIF MENGGUNAKAN SAMPEL URIN 24 JAM

PEMERIKSAAN PROTEIN URIN CARA SULFOSALISILAT 20%

PRINSIP : PROTEIN DI URIN MENGALAMI PRESIPITASI BILA URIN DIASAMKAN.TUJUAN : MENENTUKAN ADANYA PROTEIN DI URINALAT & REAGEN : TABUNG REAKSI RAK KAYU, PENJEPIT TABUNG, PIPETLARUTAN SULFOSALISILAT 20%.

CARA PEMERIKSAAN :SIAPKAN 2 TABUNG REAKSI (A & B) DI RAK, MASING2 DIISI 2 mL URINTABUNG A + 8 TETES SULFOSALISILAT 20%, GOYANG PER-LAHAN2

SUPAYA HOMOGENTABUNG B SEBAGAI PEMBANDINGPERHATIKAN ADANYA KEKERUHAN DI TABUNG A.PANASKAN TABUNG A SAMPAI MENDIDIHBILA TETAP KERUH : PROTEIN (+) : ADA(ALBUMIN+GLOBULIN)/ALBUMIN/ GLOBULIN BILA SAAT DIDIDIHKAN KEKERUHAN MENGHILANG KEMUDIAN

MUNCUL LAGI SETELAH DINGIN PROTEIN BENCE JONES (pada MULTIPEL MIELOMA)

PEMERIKSAAN PROTEIN URINCARA PEMANASAN DENGAN ASAM ASETAT

PRINSIP : PROTEIN DI URIN MENGENDAP BILA DIPANASKAN DALAM SUASANA ASAM (ASAM ASETAT)

TUJUAN : MENETAPKAN PROTEIN DI URIN

ALAT & REAGEN:TABUNG REAKSI BESAR, RAK, PIPETLAMPU SPIRITUS, PENJEPIT TABUNG, ASAM ASETAT 6%.

CARA PEMERIKSAANTABUNG REAKSI ISI DENGAN URIN 2/3 PENUHDENGAN PENJEPIT, PANASKAN BAGIAN ATAS TABUNG SAMPAI

MENDIDIH 30’’BILA ADA KEKERUHAN + 3-5 TETES ASAM ASETAT 6%. BILA

TETAP KERUH PROTEIN URIN (+)PANASKAN LAGI URIN DI TABUNG BAGIAN ATAS SAMPAI

MENDIDIH, TETAPKAN HASIL PEMERIKSAAN.

PELAPORAN :(–) : TIDAK ADA KEKERUHAN(+) : ADA KEKERUHAN RINGAN, TANPA BUTIR-BUTIR (++) : KEKERUHAN MUDAH DILIHAT, TANPA BUTIR-BUTIR (+++) : KEKERUHAN JELAS, BERKEPING2(++++) : SANGAT KERUH, BERGUMPAL- GUMPAL-GUMPAL.

PEMERIKSAAN PROTEIN URIN CARA CARIK CELUP(HANYA IDENTIFIKASI ADANYA ALBUMIN SAJA)

PRINSIP : MENETAPKAN ADANYA PROTEIN DI URIN BERDASARKAN FENOMENA KESALAHAN MENETAPKAN pH OLEH ADANYA PROTEIN.

REAGEN : CARIK CELUPCARA PEMERIKSAAN :CELUPKAN CARIK CELUP DI URIN, ANGKAT DAN

LETAKKAN DENGAN POSISI MIRING, BACA DALAM 30’’ – 60’’.

SESUAIKAN DENGAN TABEL WARNA. INTENSITAS WARNA SETARA DENGAN KADAR PROTEIN DI URIN.

CARIK CELUP HANYA SENSITIP TERHADAP ALBUMIN. BILA URIN HANYA MENGANDUNG GLOBULIN HASIL CARIK CELUP (–).

PEMERIKSAAN PROTEIN URIN SECARA KUANTITATIF.CARA ESBACH

PRINSIP : TERJADI ENDAPAN PROTEIN BILA URIN DITAMBAH REAGEN ESBACHTUJUAN : MENETAPKAN ADANYA PROTEIN SECARA KUANTITATIF (g/L)SAMPEL : URIN 12 JAM /URIN 24 JAM

CARA PEMERIKSAAN.URIN (JERNIH) DIASAMKAN DENGAN ASETAT GLASIAL

BEBERAPA TETES.ISI TABUNG ESBACH DENGAN URIN TSB SAMPAI SETINGGI

HURUF UTAMBAHKAN REAGEN ESBACH SAMPAI TANDA RSUMBAT TABUNG ESBACH, BOLAK-BALIK 12 XLETAKKAN TABUNG DALAM POSISI TEGAK SELAMA 12 JAM.BACA TINGGI PRESIPITAT (TIAP ANGKA MENUNJUKKAN g/L)

Pemeriksaan Glukosa Urin

Pemeriksaan glukosa urin merupakan pemeriksaan penyaring untuk menetapkan adanya glukosa dalam urin. Pemeriksaan dapat dilakukan dengan cara reduksi (tidak spesifik) dan cara enzimatik menggunakan reagen glukosa oksidase/hexokinase.

Reagen dan Peralatantabung reaksi, reagen Benedict, nyala api spiritus

( Bunsen), penjepit tabung reaksi, sampel urin, reagen carik celup (multistick)

Cara Reduksi (cara Benedict)

Prinsip : Glukosa (atau bahan reduktor lain) + Cu2+ Cu1+

(merah bata)

Cara :1. Masukkan 2.5 / 5 mL reagen Benedict kedalam tabung

reaksi.2. Teteskan 5 – 8 tetes urin untuk 5 mL reagen Benedict

dan 3 – 4 tetes urin untuk 2.5 mL reagen Benedict (jangan lebih) ke dalam tabung reaksi itu.

3. Masukkan tabung ke dalam air mendidih selama 5 menit atau dengan memanaskan tabung di atas nyala api kecil sampai mendidih secara perlahan-lahan selama 2 menit.

4. Angkat tabung reaksi dari api/air mendidih, kocok isinya dan baca hasilnya.

Penilaian Hasil :

Penilaian hasil dinyatakan secara semikuantitatif :

Negatip ( – ) Warna tetap biru jernih atau sedikit kehijau-kehijauan dan agak keruh

Positip + atau 1+ Hijau kekuning-kuningan dan keruh (setara dengan 0.5 – 1% glukosa

Positip ++ atau 2+Kuning keruh ( 1 – 1.5% glukosa)

Positip +++ atau 3+Jingga atau warna lumpur keruh ( 2 – 3.5% glukosa)

Positip ++++ atau 4+ Merah keruh (lebih dari 3.5% glukosa)

Carik Celup (metoda enzimztik dgn glukosa oksidase )

Prinsip : glukosa oksidase Glukosa +O2+H2O asam glukonat + H2O2 peroksidase H2O2 + kromogen warna kromogen warna teroksidasi + ADP

Cara :1. isi tabung reaksi dengan urin yang akan diperiksa sebanyak 10 mL.2. ambil satu lembar carik celup yang mengandung parameter glukosa

(dipstick/multistick).3. celupkan carik celup ke urin dalam tabung, angkat dan letakkan

dengan posisi miring, agar urin yang menempel turun ke bawah.4. baca hasil dalam 1 menit, dengan menyamakan perubahan warna di

carik celup dengan tabel warna.

Bilirubin Urin Cara HarrisonAlat dan Bahan :

Tabung Reaksi, Kertas Saring, Corong gelas

Barium Chlorida 10%, Fuchet (Trichloracetat+Ferrichlorida)

Cara Kerja

1. Masukkan 5 ml urin kedalam tabung reaksi

2. Tambahkan 5 ml Barium Chlorida 10%

3. Kocok, kemudian saring dengan kertas saring

4. Tunggu agak kering

5. Teteskan Fouchet 2 – 3 tetes diatas kertas saring

6. Perhatikan jika terdapat perubahan warna

Hasil : Positif, jika terdapat perubahan warna menjadi Hijau

Pemeriksaan Mikroskopik (Sedimen)

Cara Pemeriksaan

1. Masukkan 10 – 15ml urin segar kedalam tabung sentrifuge.

2. Pusing selama 5 menit, dengan kecepatan 1500 – 2000 Rpm.

3. Supernatan dibuang, sisakan sedimen sekitar 0,5 ml.

4. Ambil 1 tetes sedimen dan letakkan pada kaca objek lalu tutup dengan kaca penutup dan lihat dengan mikroskop.

Sedimen urin terdiri dari 2 golongan :

1. Unsur organik

Epitel, eritrosit, lekosit, silinder (LPK), Lainnya : Bakteri, sperma, parasit

2. Unsur Anorganik

Zat amorf dan kristal dalam urin, mis : Ca Oxalat, Triple fosfat, dll.