Ganti Proposal Oktober Baru

PENGGUNAAN LADA HITAM (Piper Nigrum) SEBAGAI

PHYTOGENIC FEED ADDITIVE PADA

BURUNG PUYUH PETELUR ( COTURNIX-COTURNIX

JAPONICA)

MUSTOFA HILMI

SEKOLAH PASCASARJANA

INSTITUT PERTANIAN BOGOR

BOGOR

2014

USULAN PENELITIAN

Sebagai salah satu syarat untuk melaksanakan penelitian

dalam rangka penulisan Tesis guna memperoleh gelar

Magister Sains pada Program Studi Ilmu Nutrisi dan Pakan

PENGGUNAAN LADA HITAM (Piper Nigrum) SEBAGAI

PHYTOGENIC FEED ADDITIVE PADA

BURUNG PUYUH PETELUR( COTURNIX-COTURNIX

JAPONICA)

SEKOLAH PASCASARJANA

INSTITUT PERTANIAN BOGOR

BOGOR

2014

MUSTOFA HILMI

ii

Judul Proposal: Pengaruh Pemberian Lada Hitam (Piper Nigrum) Sebagai

Phytogenic Feed Additive Pada Burung Puyuh Petelur (Coturnix-

Coturnix Japonica)

Nama : Mustofa Hilmi

NIM : D251130321

Disetujui oleh

KomisiPembimbing

Prof. Dr. Ir. Sumiati, M.Sc

Ketua

Prof. Dr. Ir. Dewi April Astuti,M.S

Anggota

Diketahui oleh

Ketua Program Studi

Ilmu Nutrisi dan Pakan

Dr. Ir. Dwierra Evvyernie A. MS, M. Sc

Dekan Sekolah Pascasarjana

Sekretaris Program Magister

Prof. Dr. Ir. Nahrowi, MSc

iii

PRAKATA

Puji dan syukur penulis panjatkan kepada Allah subhanahu wa taala atas segala karunia-Nya sehingga proposalkarya ilmiah ini berhasil diselesaikan. Tema

yang dipilih dalam penelitian yang akan dilaksanakan ini ialah ketahanan pangan,

dengan judul Penggunaan Lada Hitam (Piper Nigrum) Sebagai Phytogenic Feed

Additive Pada Burung Puyuh Petelur (Coturnix-Coturnix Japonica).

Terima kasih penulis ucapkan kepada Ibu Prof. Dr. Ir. Sumiati M.Sc dan Ibu

Prof. Dr. Ir. Dewi April Astuti,M.S selaku pembimbing dan telah banyak memberi

saran. Ungkapan terima kasih juga disampaikan kepada ayah, ibu, serta seluruh

keluarga, atas segala doa dan kasih sayangnya.

Semoga proposal karya ilmiah ini bermanfaat.

Bogor, Oktober 2014

Mustofa Hilmi

iv

DAFTAR ISI

1 PENDAHULUAN 1

Latar Belakang 1

Perumusan Masalah 2

Tujuan Penelitian 2

Manfaat Penelitian 2

2 METODE 3

Waktu dan Lokasi 3

Materi 3

Metode 4

DAFTAR PUSTAKA 12

1

1 PENDAHULUAN

Latar Belakang

Penggunaan antibiotik atau antimikrobial sebagai bahan aditif dalam pakan

ternak telah berlangsung lebih dari 40 tahun. Senyawa antibiotik sintetik tersebut

digunakan sebagai growth promotor dalam jumlah yang relatif kecil namun dapat

meningkatkan efisiensi pakan (feed efficiency) dan reproduksi ternak sehingga

dengan penggunaan bahan aditif tersebut peternakan dapat memperoleh

keuntungan lebih banyak

Akhir-akhir ini penggunaan senyawa antibiotik sintetik mengalami

penurunan dan bahkan dibeberapa negara telah melarang penggunaan antibiotik

sintetik sebagai bahan aditif dalam pakan ternak. Hal ini disebabkan karena residu

dari antibiotik sintetik yang akan menjadi racun bagi konsumen, disamping itu

antibiotik sintetik dapat menciptkan mikro-organisme yang resisten dalam tubuh

manusia atau ternak (Lee et al. 2004). Menurut Imakahi (2012) residu antibiotik

sendiri dapat memberikan efek karsinogenik dan dalam jangka panjang dapat

berakibat fatal. Wuryaningsih (2005) dan Rahmianna (2006) menyatakan bahwa

isu keamanan pangan asal ternak yang meresahkan masyarakat antara lain

cemaran mikroba patogen dan residu antibiotik dalam daging sebagai efek

samping dari pemberian antibiotik dalam pakan yang berfungsi sebagai Antibiotic

Growth Promotors (AGPs).

Langkah yang ditempuh untuk mengantisipasi hal tersebut yaitu dengan

melakukan penambahan phytogenic feed additive kedalam pakan. Phytogenic feed

additive merupakan bahan tambahan pakan yang berasal dari tanaman obat (herb)

dan rempah-rempah (spices) sebagai penganti dari Antibiotic Growth Promotors

(Lee et al. 2013) yang mampu meningkatkan performen, FCR, kecernaan,

pertambahan berat badan pada ternak ((Peri et al., 2009). Salah satu phytogenic feed additive rempah-rempah (spices) yang banyak keuntungannya dengan

memanfaatkan lada hitam (piper nigrum).

Lada hitam (piper nigrum) mengandung zat alkaloid seperti piperine.

Piperine merupakan zat yang dapat meningkatkan penyerapan selenium, vitamin

B kompleks, beta-karoten dan kurkumin serta nutrisi lainnya sehingga dapat

membantu meningkatkan performen dan kualitas karkas serta meningkatkan

imunitas dalam tubuh. Piperine juga merupakan zat aktif yang berfungsi

meningkatkan thermogenesis pada lemak tubuh (Malini et al. 1999), membantu

proses pencernaan (Great 2003), anti-inflamasi (Pradeep dan Kuttan 2004),

membantu proses metabolisme energi pada tubuh dan meningkatkan

bioavailabilitas obat-obatan tertentu dalam organisme (Karan et al. 1999)

sehingga dapat meningatkan kekebalan tubuh (imunitas).

Penambahan phytogenic feed additive berupa tepung lada hitam (piper

nigrum) kedalam pakan sebesar 1% dapat meningkatkan pertumbuhan,

produktifitas performen dan meningkatkan kualitas karkas (Safa et al. 2014) dan

meningkatkan status kesehatan ayam broiler (Abou et al. 2014), lebih lanjut

Mahmud dan Navid (2011) menjelaskan penambahan 1,5% dan 2% tepung lada

hitam (piper nigrum) dapat meningkatkan performen, kualitas karkas serta

menurunkan kolesterol darah pada burung puyuh (coturnix-coturnix japonica).

2

Mengingat sangat terbatasnya penelitian phytogenic feed additive pada burung

puyuh (coturnix-coturnix japonica) di Indonesia terutama kaitannya dengan

penambahan lada hitam (piper nigrum) sebagai phytogenic feed additive pada

pakan untuk mengetahui performen produksi, komposisi fisik dan kualitas interior

serta meningkatkan daya imunitas pada burung puyuh petelur (coturnix-coturnix

japonica), maka penelitian ini dilakukan.

Perumusan Masalah

Penggunaan lada hitam (piper nigrum) sebagai phytogenic feed additive

dapat mengantikan sintetic feed additive yang sangat aman pada burung puyuh

petelur (coturnix-coturnix japonica) dan dapat meningkatkan status kesehatan.

Hipotesis Penelitian

Penggunaan lada hitam (piper nigrum) sebagai phytogenic feed additive

didalam pakan burung puyuh petelur (coturnix-coturnix japonica) dapat

meningkatkan performen produksi, komposisi fisik dan kualitas interior serta

meningkatkan daya imunitas.

Tujuan Penelitian

Penelitian ini bertujuan untuk melihat efektifitas lada hitam (piper nigrum)

sebagai phytogenic feed additive sebagai upaya untuk memperbaiki performen

produksi, komposisi fisik dan kualitas interior serta meningkatkan daya imunitas

pada burung puyuh petelur (coturnix-coturnix japonica)

Manfaat Penelitian

Manfaat dari penelitian ini adalah merekomendasikan penggunaan lada

hitam (piper nigrum) sebagai phytogenic feed additive untuk burung puyuh

petelur (coturnix-coturnix japonica) dan memperkaya informasi ilmiah tentang

kajian phytogenic feed additive pada burung puyuh petelur (coturnix-coturnix

japonica) di Indonesia yang sampai saat ini jarang pernah dilakukan.

3

MATERI DAN METODE PENELITIAN

Waktu dan Lokasi

Penelitian ini akan dilakukan pada bulan Oktober 2014 sampai dengan

Januari 2015 di Laboratorium Lapang (Kandang C), Departemen Ilmu Nutrisi dan

Teknologi Pakan serta laboratorium Fisiologi, Fakultas Peternakan, Institut

Pertanian Bogor.

Materi

Ternak

Penelitian ini menggunakan puyuh petelur (Coturnix-coturnix japonica) betina

berumur 6 minggu atau masa produktif dengan 150 gr. Puyuh yang digunakan

sebanyak 200 ekor dibagi kedalam 4 perlakuan dengan 5 ulangan, dimana setiap

ulangan terdiri dari 10 ekor.

Tabel 1. Susunan dan kandungan nutrien ransum basal periode layer

Bahan pakan Ransum (%)

Jagung kuning 58,9

Bungkil kedele 22

Tepung ikan 4

Dedak padi 1,52

Minyak sawit 2,8

DCP 0,8

CaCO3 7,1

Premix 0,3

DL=Methionine 0,16

Total 100

Kandungan nutrien :*)

Energi bruto (kkal/kg) 2950,08

Protein kasar (%) 18,82

Lemak kasar (%) 5,36

Serat kasar (%) 2,41

Methionine (%) 0,58

Lysin (%) 1,06

Sistin (%)

Asam linoleat (%)

Ca (%)

P (%)

Na (%)

Cl (%)

0,30

1,50

3,19

0,48

0,15

0,17

Keterangan : *) Hasil hitungan berdasarkan Lesson and Summers (2008)

Ransum

Ransum penelitian disusun berdasarkan Lesson dan Summers (2008).

Ransum diberikan dalam bentuk pellet. Kebutuhan nutrien ransum didasarkan

4

kepada kebutuhan puyuh fase layer, yaitu protein 18% dan energi metabolis 2950

kkal/kg.

Kandang dan Peralatan

Burung puyuh ditempatkan pada 20 unit petak kandang percobaan dengan

ukuran 60 cm x 40 cm x 20 cm, yang masing masing berisi 10 ekor puyuh di-lengkapi tempat pakan dan tempat minum. Untuk pemanasan puyuh masing-

masing menggunakan lampu 5 watt sebagai penerangan, puyuh petelur sebaiknya

intensitas cahaya diberikan selama 17 jam, 12 jam cahaya dari sinar matahari dan

5 jam cahaya dari lampu penerangan. Ceges ditempatkan dalam suatu rungan

kandang, yang dilengkapi dengan dua buah bohlam penerangan yang masing-

masing berkekuatan 40 watt. Peralatan lain yang diperlukan adalah timbangan,

pengukur temperatur ruangan, plastik sebagai wadah ransum, ember, plastik

penampung feses dan peralatan tulis. Sebelum diisi kandang disanitasi terlebih

dahulu dengan desinfektan demikian pula tempat makan dan minum.

Metode

Perlakuan Penelitian

Perlakuan yang digunakan adalah substitusi tepung Lada Hitam (piper ni-

grum). Setiap perlakuan terdiri dari 5 ulangan. Rincian perlakuan adalah sebagai

berikut :

R0 : Ransum Basal

R1 : R0 + 1% Lada Hitam (piper nigrum)



Pada minggu pertama, dilakukan adaptasi pakan, yaitu dengan pemberian

pakan perlakuan 25 : 75 pakan komersil, perlakuan 50: 50 komersil, perlakuan

75 : 25 komersil dan 100 % pakan perlakuan. Setiap adaptasi dilakukan selama

dua hari.

Rancangan Percobaan dan Analisis Data

Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan 4 per-

lakuan dan 5 ulangan dengan model matematik sebagai berikut (Steel dan Torrie

1993).

Yij = + i + ij

Keterangan :

Yij : nilai pengamatan pada perlakuan ke-i dan ulangan ke-j

: nilai rataan umum

i : pengaruh perlakuan ke-i (i= 1, 2, 3, 4) ij : pengaruh acak pada perlakuan ke-i dan ulangan ke-j

5

Data yang diperoleh dianalisis dengan menggunakan sidik ragam analysis of

variance (ANOVA), selanjutnya jika terdapat perbedaan yang nyata antara

perlakuan maka dilanjutkan dengan uji lanjut Duncan (Matjik dan Sumertajaya

2006).

Prosedur Penelitian

Pemilihan Lada Hitam (piper nigrum)

Lada Hitam (piper nigrum) yang dipilih yaitu bulat dan hitam serta padat.

Lada Hitam (piper nigrum) digiling dengan mesin giling hingga bertekstur mash

(tepung).

Persiapan Kandang

Sebelum penelitian dimulai, kandang dibersihkan dengan air untuk

menghilangkan sisa kotoran, sampah dan debu setelah kering kemudian

disucihamakan dengan disinfektan. Pemasangan lampu pijar 40 watt diatas

kandang yang digunakan sebagai sumber cahaya dan pemanas. Penentunan letaak

kandang dilakukan secara random (acak) untuk memudahkan penulisan. Ruang

kandang 20 buah masing-masing ditempatkan di petak yang berbeda kemudian

diberi nomor 1-20. Burung puyuh 200 ekor dibagi menjadi 20 kelompok masing-

masing 10 ekor. Penempatan ke dalam kandang dengan sistem acak.

Tahap Pembuatan Ransum dan Ransum Penelitian

Pembuatan dan bahan baku ransum diperoleh dari PT Indofeed Bogor.

Penimbangan bahan baku ransum sesuai formulasi. Bahan pertama yang

dicampur adalah jagung kuning, bungkil kedelai dan tepung ikan. Bahan kedua

yang dicampur adalah tepung lada hitam, dedak padi, CaCO3 (calsium carbonate),

DCP (dicalcium phosphate), premiks dan DL-methionin. Seluruh bahan

selanjutnya diaduk hingga homogen dalam mesin pencampur (mixer). Bahan

yang telah homogen kemudian dibentuk menjadi pelletdi mesin pellet.

Pemeliharaan

Burung puyuh yang datang diistirahatkan dan langsung diberikan air

minum yang sudah dilarutkan vitamin (Vitastress) untuk menggurangi stress.

Pemeliharaan buung puyuh dilakukan selama 8 minggu. Pemberian pakan dan

minum dilakukan secara ad libitum. Pemberian pakan dan minum dilakukan

sehari sekali pada pagi hari pukul 07.00 WIB. Pencatatan dilakukan pada

pemberian pakan harian dan sisa pakan untuk mengetahui konsumsi pakan.

Pengambilan telur dilakukan setiap hari kemudian ditimbang menggunakan

timbangan digital yang bertujuan untuk bobot telur dan dihitung jumlah telur.

Pengambilan Sampel Darah

Sampel darah diambil saat umur ayam 35 hari. Waktu pengambilan pada

pagi hari pukul 06.30 WIB setelah dipuasakan 24 jam. Darah diambil dari vena

jugularis atau vena pectoralis sekali menggunakan spoit dan dimasukkan dalam

tabung berantikoagulan sebanyak 1 ml. Sebelumnya, daerah vena jugularis dan

vena pectoralis dibersihkan atau berheparin dengan alkohol 70%. Dan kemudian

dianalisa hematologi darah.

6

Penyembelian

Penyembelian burung puyuh dilakukan pada akhir penelitian. Burung puyuh

disembelih terlebih dahulu dipuasakan selama 24 jam. Penyembelihan ini

bertujuan untuk memperoleh karkas dan saluran pencernaan. Sampel diambil

secara acak sebanyak 1 ekor burung puyuh dari setiap ulangan kemudian

ditimbang masing-masing karkas dan saluran pencernaan..

Peubah yang diamati

Parameter yang diamati dalam penelitian ini sebagai berikut :

a. Performa Produksi, yaitu :

1. Konsumsi Ransum

Konsumsi ransum diukur dengan cara jumlah ransum yang diberikan diku-

rangi dengan jumlah ransum sisa selama penelitian. Penimbangan dilakukan

sekali seminggu. Untuk mendapatkan (g/ekor/hari) datanya dibagi dengan 7

hari.

Konsumsi ransum (g/ekor) = ransum pemberian pakan sisa (g)

2. Produksi telur harian/ hen day production (%)

Produksi telur harian dihitung dengan membagi jumlah telur pada hari yang

bersangkutan dengan jumlah puyuh yang hidup pada hari yang sama dikali

100%.

Hen day Production =

X 100 %

3. Produksi massa telur harian (gr/ekor/hari)

Produksi massa telur harian diperoleh dari pembagian antara produksi telur

setiap hari dengan jumlah burung puyuh yang ada selama penelitian.

Produksi massa telur harian = )

4. Berat telur (gr/ekor/hari)

Berat telur diperoleh dari dari perbandingan jumlah bobot telur yang

diproduksi dengan umlah telur yang dihasilkan.

Berat telur =

5. Konversi Ransum

Konversi ransum merupakan rasio pakan yang dikonsumsi dalam jangka

waktu tertentu dibandingkan dengan bobot telur yang dihasilkan.

Konversi Ransum = (/ / )

7

6. Mortalitas

Mortalitas merupakan suatu angka kematian yang menunjukan jumlah

puyuh mati selama pemeliharaan. Kortalitas diperoleh dari pembagian

antara jumlah burung puyuh yang mati dengan jumlah seluruh burung

puyuh dalam penelitian

b. Kualitas Telur Puyuh, yaitu :

1. Berat telur , berat Putih dan kuning (gram/butir)

Berat telur diukur dengan cara menimbang telur setiap harinya selama pene-

litian kemudian dirata-ratakan berdasarkan perlakuan dan ulangan

2. Proporsi Kuning Telur (%)

Proporsi Kuning Telur diperoleh dengan cara memisahkan kuning telur da

putih telur terlebih dahulu kemudian kuning telur ditimbang dan dilakukan

penghitungan dengan membagi bobot kuning telur dengan berat telur dan

dikalikan 100%

3. Proporsi Kuning Putih (%)

Proporsi k uning putih diperoleh dengan cara memisahkan kuning telur da

putih telur terlebih dahulu kemudian putih telur ditimbang dan dilakukan

penghitungan dengan membagi bobot kuning telur dengan berat telur dan

dikalikan 100%

4. Proporsi kerabang (%)

Proporsi kerabang diperoleh dengan cara menimbang kerabang terlebih

dahulu lalu dilakukan penghitungan dengan membagi bobot kerabang

dengan berat telur dan dikalikan 100%.

5. Haugh unit

Haugh unit untuk menentukan kualitas telur dihitung denan rumus

Stadelman dan Cotteril (1995): HU = 100 Log (H+7,57-1,7W0,37).

Keterangan :

H = tinggi putih telur kental (mm)

W = Berat telur (g/Butir)

Hasil nilau HU:

>72 = Kualitas AA

60-72 = Kualitas A

31-60 = Kualitas B

8

7. Tebal Kerabang (mm)

Tebal Kerabang (mm) diperoleh dari hasil rataan pengukuran kerabang telur

bagian runcing, tumpul, dan bagian tengah kerabang telur.

c. Kualitas Karkas dan Organ Dalam

1. Berat hidup (g/ekor)

Berat hidup (g/ekor) diperoleh dari hasil penimbangan ayam sebelum

dipotong dan sesudah dipuasakan.

2. Persentase berat karkas

Persentase berat karkas, diperoleh dengan membandingkan berat ayam

tanpa kepala, leher, cakar, dan jeroan dengan berat hidup dikalikan 100%.

3. Persentase berat lemak abdomen

Persentase berat lemak abdomen diperoleh dengan membandingkan berat

lemak yang terdapat disekitar perut dengan berat hidup dkalikan 100%.

4. Persentase berat hati

Persentase berat hati diperoleh dengan membandingkan berat hati dengan

berat hidup dkalikan 100%.

5. Persentase berat jantung

Persentase berat jantung diperoleh dengan membandingkan berat jantung

dengan berat hidup dkalikan 100%.

6. Persentase berat limpa

Persentase berat limpa diperoleh dengan membandingkan berat limpa


7. Persentase berat rempela

Persentase berat rempela diperoleh dengan membandingkan berat rempela


8. Persentase berat pankreas

Persentase berat pankreas diperoleh dengan membandingkan berat pankreas


9. Persentase berat ginjal

Persentase berat ginjal diperoleh dengan membandingkan berat ginjal


10. Persentase berat usus

9

Persentase berat usus diperoleh dengan membandingkan berat usus dengan


11. Rataan Persentase berat seka

Persentase berat seka diperoleh dengan membandingkan berat seka dengan


12. Panjang usus halus (cm)

Dengan cara menghitung bagian dari usus halus yaitu menghitung panjang

duodenum, yeyunum dan ileum.

d. Hematologi Darah

1. Penghitungan Kadar Hemoglobin (Metode Sahli)

Larutan HCl 0.01 N diteteskan pada tabung sahli sampai tanda tera

0.1 atau garis batas bawah, kemudian sampel darah dihisap menggunakan

pipet sahli hingga mencapai tanda tera atas (2.0 ml). Sampel darah segera

dimasukkan kedalam tabung dan ditunggu selama 3 menit atau hingga

berubah menjadi warna cokelat kehitaman akibat reaksi antara HCl dengan

hemoglobin membentuk asam hematid. Setelah itu larutan ditambah dengan

akuades, teteskan sedikit demi sedikit sambil diaduk. Larutan akuades

ditambah hingga warna larutan sama dengan warna standar

hemoglobinometer. Nilai hemoglobin dilihat di kolom gram % yang tertera

pada tabung hemoglobin (Sastradiprajadja et al. 1989).

2. Penghitungan Nilai Hematokrit

Analisis hematokrit pada darah dapat dilakukan dengan

menggunakan mikrohemato. Proses pengambilan darah untuk analisis

hematokrit dan Hb hampir sama, mikrokapiler yang bertanda merah atau

biru pada tetesan darah, darah dibiarkan mengalir sendiri mengisi 4/5 bagian

pipa kapiler. Ujung pipa kapiler disumbat dengan menggunakan crestaseal.

Pipa kapiler diletakkan dalam alat sentrifuge, pipa kapiler di sentrifuge

selama 5 menit, setelah itu lapisan-lapisan terdiri atas lapisan plasma yang

jernih dibagian teratas, kemudian lapisan putih abu-abu ialah trombosit dan

leukosit dan lapisan merah yang terdiri dari eritrosit. Nilai hematokrit

ditentukan dengan mengukur presentase volume eritrosit (lapisan merah)

menggunakan alat microcapillay hematocrit reader (Sastradiprajadja et al.

1989).

Tabel 2. Nilai Hematologi Burung Puyuh

Parameter Satuan Jumlah

Eritrosit (juta/mm3) 3,86 ( 2-3.86)

Hemoglobin g% 12,3 (7-13)

Hematokrit % 37 (30-37)

Leukosit ribu/mm3 20-40

Rasio 0,34-0,43

Heterofil/Limfosit*

MCV* femto liter 90-140

MCHC* % 26-35

Sumber : Sturkie dan Griminger (1976), *) Schalm (2010)

10

3. Perhitungan Jumlah Eritrosit

Sampel darah dihisap dengan menggunakan pipet eritrosit hingga

tanda tera 0,5 dengan aspirator. Menurut Sikar et al. (1984) pengambilan

darah dari tabung menggunakan pipet eritrosit dengan bantuan alat

pengisap (aspirator) sampai batas angka 1,0. Ujung pipet di bersihkan

dengan menggunakan tissu lalu hisap larutan BCB 0,5% hingga tanda 101.

Memutar pipet dengan membentuk angka 8 selama 3 menit, setelah

homogen cairan yang tidak terkocok pada ujung pipet di buang dengan

menempelkan ujung pipet ke kertas tissu. setelah itu teteskan satu tetes

kedalam homositometer, diusahakan jangan sampai ada udara yang masuk.

Setelah itu biarkan beberapa saat hingga cairan mengendap, kalau

penghitungan bisa dimulai. Agar tidak terjadi penghitungan dobel maka

sebaiknya digunakan hand counterdi bawah mikroskop dengan pembesaran

45 x 10. Menghitung eritrosit dalam hemocymeter, digunakan kotak eritrosit

yang berjumlah 25 buah dengan mengambil bagian berikut : satu kotak

pojok kanan atas, satu kotak pojok kiri atas, satu kotak di tngah, satu kotak

pojok kanan bawah, satu kotak pojok kiri bawah. Jumlah eritrosit yang

didapat dari hasil penghitungan dikalikan 104 (Sastradiprajadja et al. 1989).

Jumlah Eritrosit = a x 104

a = jumlah eritrosit hasil penghitungan dalam hemocymeter

4. MCV

Menurut Sastradipradja et al. (1989) nilai MCV dan MCHC dihitung

dengan menggunkan rumus berikut ini,

MCV (fl) adalah : 10

MCHC (%) adalah : 100

5. Penghitungan Jumlah Leukosit

Sampel darah dihisap dengan menggunakan pipet leukosit hingga

tanda tera 0,5 dengan aspirator. Ujung pipet di bersihkan dengan

menggunakan tissu lalu hisap larutan BCB 0,5% hingga tanda 11. Memutar

pipet dengan membentuk angka 8 selama 3 menit, setelah homogen cairan

yang tidak terkocok pada ujung pipet di buang dengan menempelkan ujung

pipet ke kertas tissu. setelah itu meneteskan satu tetes kedalam

homositometer, diusahakan jangan sampai ada udara yang masuk. Setelah

itu dibiarkan beberapa saat hingga cairan mengendap, lalu penghitungan

bisa dimulai. Agar tidak terjadi penghitungan ganda maka sebaiknya

menggunakan hand counter di bawah mikroskop dengan pembesaran 45 x

10. Untuk menghitung leukosit dalam hemocymeter, digunakan 4 kotak

leukosit berjumlah 16 kotak kecil. Jumlah leukosit yang didapat dari hasil

penghitungan dikalikan 50 untuk mengetahui jumlah leukosit 1 pada setiap

mm3 volume

(Sastradiprajadja et al. 1989).

Jumlah Leukosit = b X 50

b = jumlah leukosit hasil penghitungan dalam hemocymeter

11

6. Perhitungan Deferensiasi Leukosit

Perhitungan diferensial leukosit secara manual dapat dilakukan

dengan pemeriksaan preparat ulas darah. Preparat ulas darah diamati

dibawah mikroskop dengan pembesaran 1000 kali dan teteskan minyak

emersi. Setiap leukosit yang ditemukan dideferensialkan ke dalam limfosit,

heterofil, eosinofil, basofil atau monosit. Identifikasi jenis-jenis leukosit

dapat dilakukan dengan mengamati warna dan ukuran sel leukosit. Preparat

yang baik menunjukan warna kontras merah, biri keunguan, dan biru tua,

misalnyaa : - eritrosit berwarna merah, - inti leukosit berwarna ungu tua atau

biru tua, - granuka didalam sitoplasma granulosit ada yang merah, biru atau

netral, - trombosit berwarna kebiru-biruan. Penghitungan persentase jenis-

jenis leukosit dilakukan pada 100 butir leukosit yang dideferensiasikan

menjadi limfosit, heterofil, eosinofil, basofil, indek stress dan monosit

(Heller et al. 2008).

7. Kadar Malondialdehida (MDA) Plasma Darah (Rice-Evans dan Anthony,

1991)

Teknik analisa menggunakan metode Thiobarbituric Acid Reactive

Subtance (TBARS). Sebanyak 1,78 ml HCL pekat, asam trikloroasetat

(TCA) 0,25 ml dan asam tiobarbiturat (TBA) 0,5 ml dimasukkan dalam

tabung dan ditambahkan 80 ml aquadest untuk membuat larutan

campuran. Larutan campuran tersebut diambil sebanyak 1 ml dan

dimasukkan dalam tabung, kemudian dicampurkan dengan sampel darah

sebanyak 500 l. Campuran tersebut dipanaskan pada suhu 90-100 C

(oven) selama 1 jam. Selanjutnya didinginkan dengan air mengalir dan

disentrifuse 3.000 rpm selama 10 menit. Supernatan tersebut kemudian

diukur absorbansinya pada panjang gelombang 532 nm.

e. Profil Lemak Darah

Setiap peubah yang diamati, dianalisa dengan menggunakan metode

KIT (Diagnostic System International, 2005). Analisis kadar kolesterol,

HDL, LDL, dan trigliserida darah menggunakan alat Automated Clinical

Analyzer TRX-7010.Alat tersebut menganalisis sampel secara otomatis,

data analisis akan keluar dalam data print out. Prinsip kerja alat ini yaitu

dengan mencampurkan reagen dengan sampel lalu dibaca absorbansinya

sama dengan metode kit.

1. Trigliserida

Disiapkan tabung blanko berisi 10 l aquades dan 1000 l reagen kit.

Tabung standar berisi 10l larutan standar trigliserida dan 1000 l reagen

kit dan tabung sampel berisi 10l plasma dan 1000 l reagen kit. Campuran

kemudian dihomogenkan dengan vortex, diinkubasi pada suhu 20oC25oC

selama 10-20 menit. Absorbansi dibaca pada panjang gelombang 546 nm dalam waktu satu jam dengan sperktrofotometer.

Trigliserida(mg/dl)= .

. Kosentrasi standar Trigliserida (mg/dl)

12

2. Kolesterol total

Mengukur kadar kolesterol darah digunakan plasma yang telah

diperoleh sebelumnya. Disiapkan tabung blanko berisi 10l aquades dan

1000 l reagen kit, tabung standar berisi 10 l larutan standar kolesterol dan

1000 l reagen kit, tabung sample berisi 10 l plasma darah dan 1000 l

reagen kit. Campuran kemudian dihomogenkan dengan vortex kemudian

diinkubasi pada suhu 20oC25oC selama 10-20 menit. Absorbansi dibaca

pada panjang gelombang 546 nm dalam waktu satu jam setelah pencampuran dengan alat spektrofotometer.

Kolesterol (mg/dl)= .

. Kosentrasi standar Kolesterol (mg/dl)

3. Pengukuran HDL

Sebanyak 500 l plasma ditambah dengan 1000 l larutan reagen kit,

dicampur sampai homogen, kemudian didiamkan selama 10 menit pada

suhu kamar. Sentrifuse selama 10 menit dengan 4000 putaran permenit.

Plasma dipersiapkan dari endapan dalam waktu dua jam setelah sentrifugasi.

Sebanyak 100 l plasma ditambah 1000 l reagen CHOD-PAP

(Cholesterol Oxidase-P-Aminophenazone) dicampur, diinkubasi selama 10

menit pada suhu 20-250C. Absorbansi dibaca dalam waktu satu jam pada

panjang gelombang 546 nm. Untuk blanko reagen dibuat dari 100 l air aquadest ditambah dengan 1000 l reagent CHOD-PAP dan standar terbuat

dari 100 l standar kolesterol ditambah dengan 1000 l reagent CHOD-PAP.

HDL (mg/dl) = .

. Kosentrasi standar HDL (mg/dl)

4. Pengukuran LDL

Metode pengukuran LDL dihitung dengan menggunakan metode

perhitungan secara tidak langsung yang disebut metode Friedwald

(Friedwald et al, 1972)

HDL (mg/dl) =

5

DAFTAR PUSTAKA

Bravo. 2013. Dietary supplementation of young broiler chickens with capsi-

cum and turmeric oleoresins increases resistance to necrotic enteritis. Br. J.

Nutr. 110:840-847

Brugalli, I. (2003). Alimentacao atlernativa: an utilizacao de fitoterapicos ou

nutraceuticos comomoduladores da imunidade e desempenho animal. Anais

do Simposio sobre Manejo e Nutr Cad de Aves e Suinos; Campinas, Sao

Paulo., Brasil. Campainas: (BNA) pp. 167-182

Friedewald, W. T., R. I. Levy dan D. S. Fredriscson. 1972. E stimation of

the concentration of low-density lipoprotein cholesterol in plasma without

use of the preparative ultra-centrifuge. Clin Chem18: 499-502.

Great, H.H. (2003). Plants and plant extracts for improving animal productivity.

Proc. Nutr. Soc., 62: 279-290.

Lee, K. W., H. Everts, and A. C. Beynen. 2004. Essential oils in broiler nutrition.

Int. J. Poult. Sci. 3:738-752.

13

Lesson S, Summers J. Lee, S. H., H. S. Lillehoj, S. I. Jang, E. P. Lillehoj, W. Min,

and D. Departement of Animal and Poultry Science, University

Guelp.University Books, Canada.

Karan, R.S.; Bhargava, V.K.; Garg, S.K. Effect of trikatu, an Ayurvedic

prescription, on the pharmacokinetic profile of rifampicin in rabbits.

Journal of Ethnopharmacology, v.64, p.259-264, 1999.

Khalaf, A. N., A. K. Shakya, A. Al-Othman, Z. El-Agbar, and H. Farah. 2008.

Antioxidant activity of some common plants. Turkish J. Biol. 32:51-55.

Hassan, M.S.H.; Abo Taleb, A.M.; Wakwak, M. and Yousef, B.A. (2007).

Productive, physiological and immunological effects of using some natural

feed additives in Japanese quail diets. Egyptian Poultry Science, J. 27(11):

557-588.

Heller, M, Lynette. M, Veach. 2008. E Clinical Medical Assasting Professional,

Field Smart Approach to The Workplace. New York (US): Nelson Education,

Ltd.

Hui, Y.H. (1996). Oleoresins and essential oils. In: Hui, YH, editor. Baileys industrial oil and fat products. New York, Wiley-Interscience Publication,

Cap. 6. pp: 145-153

Imakahi (2012). Bahaya Residu Antibiotik Dalam Produk Pangan Asal Daging

Ayam.http: //imakahi.wordpress.com.2012/08/10/bahaya-residu-antibiotika-

dalam produk-pangan-asal-daging-ayam/. Fakultas Peternakan. Instintut Pertanian Bogor, Bogor.

Malini, T., J. Arunakaran, M. M. Aruldhas, and P. Govindarajulu. 1999. Effect

of piperine on lipid composition and enzyme of pyruvate malate cycle in

the testis of the rat in vivo. Biochem. Mol. Biol. Int. 47:537-545.

Mattjik AA, Sumertajaya IM. 2006. Perancangan percobaan. IPB Press. Bogor.

Mittal, R.; Gupta, R.L. In vitro antioxidant activity of piperine. Methods and

Findings in Experimental and Clinical Pharmacology, v.122, p.271-274, 2000.

NRC. 1994. Nutrient Requirement of Poultry. 9th Revised Edition. National

Research Council. National Academy Press. Washington, D.C, USA.

Pradeep, C.R.; Kuttan, G.Piperine is a potent inhibitor of nuclear factor kB (NF kB), c Fos, CREB, ATF 2 and pro inflammatory cytokine gene expression in B16F-10 melanoma cells. International Immunopharmacology,

v.4, p.1795-1803, 2004.

Prawirokusumo, S., 1990. Ilmu Gizi Komparatif. BPFE, Yogyakarta

R. Abbou-Elkhair, H. A, Ahmed, S. Saelim. 2014. Effects of Black Pepper (Piper

Nigrum), Tumeric Powder (coriandrum Sativum) and their combinations as

Feed Additives on Growth Performance, Carcass Traits, Some Blood

Parameters and Humoral Immune Response of Broiler Chickens. Asian-

Australasian Journal Sciences. Vol. 27. No 6: 647-854.

Rahmianna, A. A. 2006. Aflatoksin pada kacang tanah dan usaha untuk

mengendalikannya. Makalah disampaikan dalam forum Aflaktosin Indonesia.

Fakultas Teknologi. Pertanian Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta.

24/02/2006.

Reddy, S.V.; Srinivas, P.V.; Praveen, B.; Kishore, K.H.; Raju, B.C.; Murthy,

U.S.; RAO, J.M. Antibacterial constituents from the berries of Piper nigrum.

Phytomedicine, v.11, p.697-700, 2004.

14

Rice-Evans, C. A. & T. D. Anthony. 1991. Symons MCR, Technique in Free

Radical Research. Elsevier Publication, Nederland.

Safa, M. A, Wahab El-Tazi. 2014. Response of Broiler Chicken to Dets

Containing Different Nixture Powder Levels of Red Pepper and Black Pepper

as Natural Feed Additive. Animal and Veterinary Sciences. Vol. 2, 81-86.

Safa, M. A, Wahab El-Tazi, Mukhtar, A. M, K.A. Mohamed, Mohamed, H. T.

2014. Effect of Using Black Pepper as Natural Feed Additives on Performance

and Carcas Quality of Broiler Chicks. Global Advancced Journal of

Agricultural Science. Vol. 3 (4)

SastradipradjaD., S. H. S. Sikar, R. Wijayakusuma, T. Ungerer, A. Maad,

H. Nasution, R. Suriawinata, dan R. Hamzah. 1989. Penuntun Praktikum

Fisiologi Veteriner. Pusat Antar Universitas Ilmu Hayati. Institut

Pertanian Bogor. Bogor.

Schalm. 2010. Schalms Veterinary Hematology. 6th Ed. Editor: Douglas J, Weiss, K., Jane W. Blackwell Publishing Ltd, Oxford.

Sikar, S. H. S., R. Suriawinata., T. Ungerer., dan D. Sastradipradja. 1984.

Larutan pengencer darah unggas untuk menghitung jumlah leukosit secara

langsung. Laporan Penelitian. Jurusan Fisiologi dan Farmakologi, Fakultas

Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor. Bogor.

Singh, Y.N. Kava: an overview. Journal of Ethnopharmacology, v.37, p.13-45,

1992.

Steel RGD, Torrie JH. 1993.Prinsip dan prosedur statistika. Edke 2. Terjemahan:

B. Sumantri. Gramedia Pustaka Utama, Jakarta.

Sturkie, P. D. & Griminger. 1976. Blood : Physical characteristic, formed

elements, haemoglobin, and coagulation. Dalam P. D. Sturkie [Editor] Avian

Physicology. Springer Verleg, New York Wuryaningsih, E. 2005. Kebijakan Pemerintah Dalam Pengamanan Pangan Asal

Hewan. Proseding Lokakarya Nasional Keamanan Pagan Produk Peternakan

Bogor, 02/02/2005, Pusat Penelitian dan Pengembangan Peternakan.

Bogor.Hlm, 9-13.

15

Lampiran 1. Kebutuhan bahan pakan untuk Burung Puyuh Petelur (Coturnix-

Coturnix Japonica).

Nama bahan

Kebutuhan

Periode Produksi

(kg) Total (kg)

Harga/kg

(Rp) Total harga (Rp)

Jagung Kuning 176.7 177 4.300 796,500

Dedak 4,56 5 3.000 16,000

Bkl. Kedele 66 67 10.000 670,000

T. Ikan 12,06 13 10.000 130,000

CaCo3 21,3 22 1.000 13,200

Minyak Sawit 8,4 9 13.000 117,000

Premik 0,9 1 25.000 25,000

NaCl 0,66 1 1.800 1,000

DL.Methionin 0,42 0,5 75,000 75.000

Total

1992.500

Daftar biaya analisa

Jenis analisa Biaya analisa (Rp/Sampel)

Analisa Proksimat lada hitam

a. Kadar air 5.000

b. Kadar abu 10.000

c. Kadar protein kasar 50.000

d. Kadar serat kasar 35.000

e. Lemak total 40.000

Total biaya 140.000

Daftar biaya analisa fitokimia lada hitam

Jenis kegiatan Biaya

1. piperine 100.000

2. flavanoid 100.000

3. Minyak astirin 50.000

4. Fitokimia kualitatif 70.000

Total biaya 320.000

Daftar biaya pemeliharaan ayam

Jenis kegiatan Biaya

1. Pembelian Puyuh Petelur 3.000.000

2. Sanitasi kandang 300.000

3. Vitamin 50.000

4. Transportasi 500.000

5. Biaya tak terduga 500.000

Total biaya 4.350.000

16

Daftar biaya analisa sampel

Jenis analisa Biaya analisa

(RP/sampel)

Biaya analisa (20 sampel)

a. Analisa kolesterol 50 000 1 000 000

b. Analisa trigliserida 40 000 800 000

c. HDL-kolesterol 50 000 1 000 000

d. LDL- kolesterol 50 000 1 000 000

e. Analisa BDM 10 000 200 000

f. Analisa BDP 10 000 200 000

g. Analisa hematokrit 5 000 100 000

h. Diferensiasi leukosit 5 000 100 000

i. Analisa hemoglobin 5 000 100 000

Total biaya 4.500 000

Jadi total biaya keseluruhan

1. Biaya analisa proksimat lada hitam = Rp 140.000,- 2. Biaya pemeliharaan = Rp 4.350.000,- 3. Biaya pakan = Rp 1992.500,- 4. Biaya analisa fitokimia lada hitam = Rp 4.500 000,- 5. Biaya analisa sampel = Rp 320 000,-

Total biaya = Rp 11.302.500,-

Ganti Proposal Oktober Baru

Documents

Transcript of Ganti Proposal Oktober Baru